pcr反应中如何设置对照

标准的PCR反应体系：10×扩增缓冲液10ul4种dNTP混合物各200umol/L引物各10～100pmol模板DNA0.2ugTaqDNA聚合酶2.5uMg2+1.5mmol/L加双或三蒸水至10

PCR技术已经在生物学研究和临床医学检验领域中得到了广泛的应用,PCR技术也日臻完善.PCR技术操作简便,特异性强,敏感度极高,正因为敏感度高,很容易受其他因素的影响,因此要得到准确可靠的反应结果,需

这个你是想问什么呢?如何检测PCR结果?再问：就是在提取RNA之后，逆转录之后，得到了模板。先用两个Outer引物检测一下，这步的目的是什么？再答：Outer引物检测，你是做巢式PCR吗？如果是检测模

那要看你做的那种PCR了,如果是为了检测某种DNA或者RNA的话,那你的空白对照,就是在那个空白对照的体系里不加入底物就好了

在做QRT-PCR时,一定要有内参,即在PCR时,每个标本都要做对应的内参,而且每次都是看家基因,一般用bate-actin,有时也用GAPDH.内参的选择：普通PCR内参的大小没有多大要求,但rea

你的一对引物的TM值最好不要超过3℃,退火温度的一般比TM值低5℃,太低的退火温度会导致非特异性的扩增反应参数可以设为：94℃2m94℃30s｝50℃30s｝30cycles72℃30s｝4℃∞若是无

探究酵母菌呼吸方式那个实验,典型的对比实验,没有对照组楼下说的自身对照也是属于对照实验的再问：对对对还有吗再答：呃，印象中就这么一个特殊的对比实验。老教材没有对比实验的说法，新教材我只教到必修二，后面

高中生物实验你更改都需要对照组的.写了没坏处

是反转录PCR么?如果是realtime的话应该可以确定是否到平台期吧?以参考文献来回答也是可以的.关键你要明白对方为什么问这件事.如果没有任何迹象表明你的实验结果不能很好支持你的结论的话,是不应该吸

你做个退火温度的梯度吧!大部分的PCR都有这一功能!退火温度选择一个范围,如50-60度,PCR仪器在一排（12个孔）或一列（8个孔）中每个孔的温度都不同,你在相应的孔中放入待反应的PCR混合液（保证

不知道你说的是PCR循环中的延伸还是循环结束后的终延伸.循环中的延伸步骤实际上是让taq聚合酶开始合成DNA,taq聚合酶是高温活性酶,在72度的时候合成DNA.如果是循环结束后的5～10分钟终延伸,

一、可以使用oligo6或者primer5等软件设计.用这些软件选择引物,主要就是看引物的稳定性,形成二聚体的可能性,退火温度等等参数.二、如果你的序列同源性不高,GC含量也还可以的话,可以使用一些经

先用几个循环把退火温度降下来然后再固定那个温度跑20个循环呗再问：你这是降落PCR吧？再答：是要不同的管子放一起做梯度？循环数和普通的一样啊

1.提出问题:绿叶只有在光下才能合成淀粉吗?2.做出假设：绿叶只有在光下才能合成淀粉.3.材料器具:盆栽马铃薯、黑纸、回形针、小烧杯、大烧杯、培养皿、三脚架、石棉网、酒精灯、火柴、镊子、酒精、碘液、清

生物实验中如何设置对照实验所谓对照实验是指除所控因素外其它条件与被对照实验完全相等的实验.对照实验设置的正确与否,关键就在于如何尽量去保证“其它条件的完全相等”.具体来说有如下四个方面：①所有用生物材

和实验组做对比更好的说明实验组的科学性和排除其它因素的干扰

循环中的延伸步骤实际上是让taq聚合酶开始合成DNA,taq聚合酶是高温活性酶,在72度的时候合成DNA.如果是循环结束后的5～10分钟终延伸,它的作用实际上是起到一个补偿作用,有时候你循环过程中的延

这个比较简单,其实你买Taq中就有反应体系,其实这个体系都是公司的人大量实验做出来的,我们实验室现在用Takra的Taq酶,体系就按说明书加的,不过体系是50ul的,我们把所有都减半做了25ul体系就

从两条引物Tm看,退火温度大致在52~57℃左右.在这个范围内做下温度梯度.标准PCR体系就可以.ps：引物有些偏长.

一、为说明生物体内某物质相对其他物质表现出的生理功能,而将不同物质设置对照进行比照说明二、为说明生物体某些生理功能产生的条件或某些物质发挥作用的条件,而将不同条件设置对照进行比照说明三、为了保证实验中